Auf einen Blick

Succinat gehört zu den Zwischenprodukten des Citratzyklus. Bei seiner Oxidation zu Fumarat werden Elektronen an den mitochondrialen Komplex II übertragen. Dieser Enzymkomplex verbindet eine Reaktion des Citratzyklus mit der Atmungskette. Succinat kann außerdem zwischen Zellen ausgetauscht werden und Rezeptoren aktivieren. Seine Funktion hängt damit vom Ort, der Zielzelle und der Stoffwechsellage ab. [1] [2]

Succinatdehydrogenase: eine Verbindung zur Atmungskette

Die Succinatdehydrogenase wird auch als Komplex II bezeichnet. Beim menschlichen Enzym bilden SDHA und SDHB den wasserlöslichen Anteil; SDHC und SDHD verankern den Komplex in der inneren Mitochondrienmembran. SDHA enthält den Cofaktor Flavin-Adenin-Dinukleotid (FAD). SDHB trägt Eisen-Schwefel-Zentren. Über diese Ausstattung werden Elektronen aus der Succinatoxidation zum Ubichinon in der Membran weitergeleitet. Eine 2023 veröffentlichte Kryoelektronenmikroskopie-Studie erschloss den Aufbau des menschlichen Komplexes mit einer Auflösung von 2,86 Ångström. [1]

Der Ort des Moleküls entscheidet über den möglichen Weg

Innerhalb eines Mitochondriums ist Succinat Teil enzymatischer Stoffwechselreaktionen. Im Extrazellularraum, also außerhalb der Zellen, kann es an einen Rezeptor auf der Zelloberfläche binden. He und Mitarbeitende identifizierten 2004 GPR91 als Succinat-Rezeptor. Heute ist dafür die Bezeichnung SUCNR1 gebräuchlich. Die Bindung eines Liganden (Rezeptorbinders) löst intrazelluläre Signale aus. [2]

Succinatfreisetzung bei körperlicher Belastung

Reddy und Mitarbeitende untersuchten zehn gesunde Männer bei einer einstündigen Belastung auf dem Fahrradergometer. Arterielle und venöse Blutproben ermöglichten es, die Succinatfreisetzung aus arbeitender Muskulatur zu verfolgen. Die Konzentration im venösen Abstrom stieg während der Belastung an. Ergänzende Zellversuche erschlossen einen pH-abhängigen Transportweg über MCT1, den Monocarboxylattransporter 1. [3]

Zellkommunikation im Muskelgewebe

Im experimentellen Teil derselben Arbeit wurden Veränderungen an Muskelgewebe von Mäusen untersucht. SUCNR1-Signale betrafen unter anderem Stromazellen und Satellitenzellen. Genetische Eingriffe veränderten die Antwort auf Training, darunter Merkmale der Innervation und der extrazellulären Matrix. Die menschlichen Blutmessungen zeigen den Austausch eines Metaboliten während Belastung; die gezielten Eingriffe erschließen Mechanismen im Maus- und Zellmodell. [3]

Aufnahme in braune Fettzellen

Mills und Mitarbeitende fanden bei kälteexponierten Mäusen eine Anreicherung von Succinat im braunen Fett. Untersuchte braune Fettzellen konnten Succinat aus dem umgebenden Medium aufnehmen. Experimente an Mausmodellen und braunen Zellkulturen, darunter menschlichen Zellen, verbanden die Oxidation durch Succinatdehydrogenase mit reaktiven Sauerstoffspezies und einer erhöhten thermogenen Atmung. Die gemessene Wirkung war an UCP1 gekoppelt. Damit wird ein Weg sichtbar, über den die Verfügbarkeit eines Metaboliten die Wärmebildung beeinflussen kann. [4]

UCP1: Energie des Protonengradienten wird als Wärme frei

Das Uncoupling Protein 1 (Entkopplungsprotein 1) sitzt in der inneren Mitochondrienmembran. Es ermöglicht einen Protonenrückstrom in die Matrix. Dabei wird Energie des elektrochemischen Gefälles als Wärme frei. Arbeiten an gereinigtem menschlichem UCP1 untersuchen, wie Nukleotide an das Protein binden und seine Aktivität hemmen. Succinatoxidation und UCP1-Funktion betreffen somit verschiedene Schritte innerhalb der mitochondrialen Wärmebildung. [5]

Räumlicher Mitochondrienschnitt mit vergrößerter innerer Membran. Die Atmungskette befördert Protonen aus der Matrix in den Intermembranraum; der Pfeil durch UCP1 führt in die Matrix zurück.
Die Atmungskette baut über der inneren Membran einen Protonengradienten auf. Über UCP1 fließen Protonen in die Matrix zurück; dabei wird Energie als Wärme frei. KI-generierte Illustration. [5]
Gesundheitskapitel

Ein anderer Zellkontext: aktivierte Makrophagen

Makrophagen (Fresszellen) passen ihren Stoffwechsel bei Immunreaktionen an. Tannahill und Mitarbeitende untersuchten Mausmakrophagen, die durch Lipopolysaccharid, einen bakteriellen Zellwandbestandteil, aktiviert wurden. Dabei reicherte sich Succinat an. Die Arbeit verband diese Veränderung mit der Stabilisierung von HIF-1α, einem Regulator der Genaktivität, und einer erhöhten Bildung von Interleukin-1β. Die Konzentration eines Metaboliten kann damit in ein Programm der angeborenen Immunantwort eingebunden sein. [6]

Rezeptorsignale können auch den Kreislauf beeinflussen

In der Arbeit zur Entdeckung von GPR91 erhöhte Succinat den Blutdruck von Versuchstieren. Dabei war das Renin-Angiotensin-System beteiligt. Der Effekt entfiel bei Mäusen mit fehlendem GPR91. Dieser Befund erschließt eine weitere Verbindung zwischen Stoffwechsel und Organregulation: Ein zirkulierendes Zwischenprodukt erreicht einen Rezeptor und beeinflusst nachgeschaltete hormonelle beziehungsweise vaskuläre Antworten. [2]

Welche Frage welches Versuchsmodell beantwortet

Die Gabe von Succinat wurde in der Thermogenesearbeit auch bei Mäusen mit fettreicher Ernährung untersucht. Körpergewicht und Glucosetoleranz gehörten zu den erhobenen Größen; zusätzlich wurden Tiere mit verändertem UCP1 untersucht. Solche Kombinationen aus Stoffgabe, genetischer Veränderung und Funktionsmessung prüfen eine mechanistische Beziehung im jeweiligen Tiermodell. [4]

Medizinische und biochemische Bezeichnungen

  • Metabolit: Zwischen- oder Endprodukt einer Stoffwechselreaktion; Succinat ist ein Zwischenprodukt des Citratzyklus. [1]
  • SUCNR1 / GPR91: G-Protein-gekoppelter Rezeptor, der durch extrazelluläres Succinat aktiviert wird. [2]
  • Parakrine Signalübertragung: ein lokal freigesetzter Stoff beeinflusst benachbarte Zellen. [3]
  • Reaktive Sauerstoffspezies: reaktionsfähige Sauerstoffverbindungen, die in den untersuchten Fettzellen zur Signalvermittlung beitragen. [4]

Verbundene Wissensbereiche

Das Kapitel Braunes Fett und Wärmebildung vertieft UCP1 und die Ausstattung thermogener Zellen. Die Übersicht zum Stoffwechsel verbindet Zellreaktionen mit der Arbeit von Organen.

Quellen und Weiterlesen

  1. Du Z et al. (2023): Structure of the human respiratory complex II PNAS 120, e2216713120. Abstract sowie Structure of the Human CII und Electron Transfer: Untereinheiten, Succinatoxidation und Ubichinon. Abgerufen am 08.11.2026.
  2. He W et al. (2004): Citric acid cycle intermediates as ligands for orphan G-protein-coupled receptors Nature 429, 188–193. Abstract: Succinat als Ligand von GPR91 und rezeptorabhängige Kreislaufwirkungen im Tierexperiment. Abgerufen am 08.11.2026.
  3. Reddy A et al. (2020): pH-Gated Succinate Secretion Regulates Muscle Remodeling in Response to Exercise Cell 183, 62–75.e17. Abstract, Ergebnisse zu Succinatfreisetzung, MCT1 und SUCNR1 sowie Humanstudienmethoden. Abgerufen am 08.11.2026.
  4. Mills EL et al. (2018): Accumulation of succinate controls activation of adipose tissue thermogenesis Nature 560, 102–106. Abstract und Haupttext: Aufnahme, SDH, reaktive Sauerstoffspezies und UCP1 in Maus- und Zellversuchen. Abgerufen am 08.11.2026.
  5. Jones SA et al. (2023): Structural basis of purine nucleotide inhibition of human uncoupling protein 1 Science Advances 9, eadh4251. Abstract und Einleitung: menschliches UCP1, Protonenleitung und Nukleotidbindung. Abgerufen am 08.11.2026.
  6. Tannahill GM et al. (2013): Succinate is an inflammatory signal that induces IL-1β through HIF-1α Nature 496, 238–242. Abstract: aktivierte Mausmakrophagen, Succinat, HIF-1α und Interleukin-1β. Abgerufen am 08.11.2026.